細胞收到后注意事項

1、收到細胞，請查看瓶子是否有破裂，培養(yǎng)基是否漏出，是否渾濁，如有請盡快聯(lián)系

2、收到細胞，如包裝完好，請在顯微鏡下觀察細胞。,由于運輸過程中的問題，細胞培養(yǎng)瓶中的貼壁細胞有可能從瓶壁中脫落下來，顯微鏡下觀察會出現(xiàn)細胞懸浮的情況，出現(xiàn)此狀態(tài)時，請不要打開細胞培養(yǎng)瓶，先不要把培養(yǎng)基吸出來。應立即將培養(yǎng)瓶置于細胞培養(yǎng)箱里靜止3-5小時左右，讓細胞先穩(wěn)定下，再于顯微鏡下觀察，此時多數(shù)細胞會重新貼附于瓶壁。如細胞仍不能貼壁，請用臺盼藍染色法鑒定細胞活力，如臺盼藍染色證實細胞活力正常請按懸浮細胞的方法處理

3. 收到細胞時如無異常情況 ，請在顯微鏡下觀察細胞密度，如為貼壁細胞，未超過80%匯合度時，用75%酒精（建議配置75%酒精的水也是滅菌超純水。噴灑整個瓶消毒后放到超菌臺內，嚴格無菌操作：然后打開蓋子，先用槍頭把培養(yǎng)基吸出10ML左右，放在離心管里，然后瓶口過火，（嚴禁直接傾倒），這樣可以保證不污染，再用10ML的移液管，將剩余的培養(yǎng)基全部吸出，放于離心管中，培養(yǎng)瓶中只剩余5-10ML左右培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)就可以了）：超過80%匯合度時，請按細胞培養(yǎng)條件傳代培養(yǎng)。

如為懸浮細胞，吸出培養(yǎng)液，1000轉/分鐘離心3-5分鐘，吸出上清，管底細胞用新鮮培養(yǎng)基懸浮細胞后移回培養(yǎng)瓶。

4，將培養(yǎng)瓶置于37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，蓋子微微擰松。吸出的培養(yǎng)基可以保存在滅菌過的瓶子里，存放于4℃冰箱，以備不時之需。第二天換液時，要配制新鮮的培養(yǎng)基和進口胎牛血清。這樣對細胞生長更好。不要再用我們原瓶的培養(yǎng)基了。

5 、24小時后，細胞形態(tài)已恢復并貼滿瓶壁，就可以傳代了。（貼壁細胞）將培養(yǎng)瓶里的培養(yǎng)基倒去，加3-5ml（以能覆蓋細胞生長面為準）PBS或Hanks’液洗滌后棄去。加0.5-1ml  0.25%含EDTA的胰酶消化，消化時間以具體細胞為準，一般1-3分鐘，不超過5分鐘。可以放入37℃培養(yǎng)箱消化。輕輕晃動瓶壁，見細胞脫落下來，加入3-5ml培養(yǎng)基終止消化。用移液管輕輕吹打瓶壁上的細胞，使之wan全脫落，然后將溶液吸入離心管內離心，1000rpm/5min。棄上清，視細胞數(shù)量決定分瓶數(shù)，一般一傳二，如細胞量多可一傳三，有些細胞不易傳得過稀，有些生長較快的細胞則可以多傳幾瓶，以具體細胞和經驗為準。（懸浮細胞）用移液管輕輕吹打瓶壁，直接將溶液吸入離心管離心即可。

6，貼壁細胞 ，懸浮細胞。嚴格無菌操作。換液時，換新的細胞培養(yǎng)瓶和換新鮮的培養(yǎng)液和進口胎牛血清，37度    5%CO2 培養(yǎng)

7.  收到細胞后，請鏡下觀察細胞，用恰當方式處理細胞。若懸浮的細胞較多，請離心收集細胞，接種到一個新的培養(yǎng)瓶中。棄掉原液，使用新鮮配制的培養(yǎng)基，使用進口胎牛血清. 剛接到細胞，若細胞不多時 血清濃度可以加到15％去培養(yǎng)。若細胞迏到80%左右 ，血清濃度還是在10％。

胰蛋白酶消化；

加入消化液：小心吸出舊培養(yǎng)液，用PBS清洗（沖洗），加入適量消化液（胰蛋白酶液），注意消化液的量以蓋住細胞最好，最佳消化溫度是37℃。顯微鏡下觀察細胞：倒置顯微鏡下觀察消化細胞，若胞質回縮，細胞之間不再連接成片，表明此時細胞消化適度。吸棄消化液加入培養(yǎng)液：棄去胰蛋白酶液，注意更換吸管，加入新鮮的培養(yǎng)液。

吹打分散細胞：

吹打制懸：用滴管將已經消化細胞吹打成細胞懸液。吸細胞懸液入離心管：將細胞懸液吸入10ml離心管中.平衡離心：平衡后將離心管放入臺式離心機中，以1000轉/分鐘離心6-8分鐘。棄上清液，加入新培養(yǎng)液：棄去上清液，加入2ml培養(yǎng)液， 用滴管輕輕吹打細胞制成細胞懸液。